Institute細胞的使用方法介紹

　　Institute細胞要要想在培養基中生長(cháng)，便要創(chuàng )造細胞能夠生長(cháng)的緩沖系統。細胞較脆弱一旦暴露在不適宜的環(huán)境中便會(huì )立馬死亡。

      在對培養基的環(huán)境進(jìn)行調試的時(shí)候，要做成一套緩沖系統，能夠在方方面面照顧到細胞的成長(cháng)，在細胞培養基中接入碳酸氫鈉讓其與空氣中的二氧化碳平衡，設置一定量的培養液，讓細胞正常的成長(cháng)。并且在培養的過(guò)程中，不要把細胞培養基的蓋得太緊，以免造成氧氣的缺失，影響細胞的活性。

　　使用方法

　　Institute細胞是一種高度分化細胞，屬于不增殖細胞群，不能增殖和傳代，只能進(jìn)行原代培養且存活時(shí)間較短。取出細胞培養瓶，用75%酒精消毒瓶身，拆下封口膜，放入37℃、5%CO2、飽和濕度的細胞培養箱中靜置3-4h，以穩定細胞狀態(tài)。

　　吸出細胞培養瓶中的培養基，添加0.25%胰蛋白酶消化液1mL至培養瓶中，輕微轉動(dòng)培養瓶至消化液覆蓋整個(gè)培養瓶底后，吸出多余胰蛋白酶消化液，37℃溫浴1-3min；倒置顯微鏡下觀(guān)察，待細胞回縮變圓后，再加入5ml*培養基終止消化。

　　用吸管輕輕吹打混勻、分散細胞，置于37℃、5%CO2、飽和濕度的細胞培養箱中靜置培養；待細胞*貼壁后，培養觀(guān)察；之后每隔2-3天更換新鮮的*培養基。